Создание новых и совершенствование существующих в настоящее время высокопродуктивных пород и кроссов сельскохозяйственной птицы требует всестороннего сравнительного анализа их качества. Морфологические и физико-химические показатели яиц, по которым проводят их оценку под влиянием различных факторов, подвержены значительной изменчивости, но наибольшей вариабельностью отличаются морфологические признаки и в значительно меньшей степени физико-химические, характеризующие содержимое яиц, которые, в конечном счете, определяют их выводимость. При отборе яиц на инкубацию следует помнить о том, что те или иные отклонения показателей, определяющих качество, от оптимальных могут в значительной или незначительной степени повлиять как на результаты инкубации, так и на качество выведенного молодняка, его дальнейшую жизнеспособность и продуктивность.

К наиболее важным контролируемым показателям следует отнести: массу яиц, концентрацию водородных ионов белка и желтка, кислотное число желтка, витамин А,  и каротиноиды.

Концентрация водородных ионов (рН) яиц дает возможность определить реакцию белка и желтка очень важную для биологических процессов. Белок свежих яиц должен иметь рН - 8,5-9,0, желток - 5,8-6,2. Увеличение реакции в щелочную сторону приводит к ухудшению биологических качеств белка и его разжижению, кроме этого происходит потеря активности лизоцима и такие яйца теряют свои иммунобиологические свойства.

Кислотное число желтка, показывающее степень распада липидов, не должно превышать 5 мг КОН на 1 г желтка. При инкубации яиц с кислотным числом свыше этого значения наблюдается повышенная смертность эмбрионов с признаками эмбриональной дистрофии.

Контроль качества яиц по показателям рН и кислотное число необходим, так как при изменении их нормы можно косвенно судить о качестве кормов (наличие в нем ксенобиотиков), либо о нарушении технологии хранения яиц до инкубации.

Витамины и каротиноиды яйца играют огромную роль в обмене веществ развивающегося эмбриона, а оставаясь в желточном мешке, способствуют лучшему усвоению питательных веществ корма в первые дни жизни выведенного молодняка. Количество витаминов в яйцах зависит не только от наличия их в кормах для несушек, но и от возраста птицы, породы, сезона, условий содержания, ее физиологического состояния, сочетания и соотношения питательных веществ и витаминов в кормовых смесях или же присутствия в них ксенобиотиков различного происхождения. Все эти факторы влияют и на использование витаминов развивающимися эмбрионами во время инкубации. Оптимальным содержанием каротиноидов в желтке считается - 15-20, витамина А - 6-9. Сохранение яйцами своих первоначальных свойств, т.е. с момента снесения, во многом зависит от условий, в которых они находятся до начала их инкубирования.

Значительное увеличение яйценоскости у кур современных кроссов привело к сокращению сроков формирования яйца, вследствие чего зародыши в них находятся на более ранней стадии развития (прегаструлы). Поэтому яйца с такими зародышами без ущерба для выводимости не следует хранить свыше 5 суток, а с продолжительностью 10 суток - вообще не рекомендуется закладывать на инкубацию, так как кроме снижения выводимости на 10-16 % увеличивается количество слабого молодняка с низкой сохранностью при выращивании.

Таким образом, повышение выводимости яиц и качества выведенного молодняка является управляемым процессом при условии регулярного проведения контроля за качеством яиц и эмбриональным развитием с.-х. птицы.

Сотрудники отдела химико-токсикологический проводят исследования инкубационного яйца по показателям: средний вес яиц, рН-желтка, рН- желтка, кислотное число желтка, содержание Са в скорлупе, оплодотворяемость, содержание в желтке.: каратиноидов, витамина А и витамина Е.

Под этим названием скрывается одно из опаснейших заболеваний, которым только может болеть кошка.

Панлейкопения кошек (чумка, парвовирусный энтерит) является высококонтагиозным заболеванием, характеризуется высокой летальностью.

Этиология  Возбудителем кошачьей чумы является ДНК-содержащий вирус, из группы парвовирусов Virus panleukopenia feline. Он довольно устойчив к нагреванию (при 60°С погибает через 1 час), ко многим дезинфицирующим средствам и может оставаться в окружающей среде до 24 месяцев не теряя своей вирулентности.

Эпизоотологические данные  К заболеванию восприимчивы не только домашние кошки, но и другие представители семейства кошачьих (тигры, львы, леопарды и т.д.), а также семейство куньих (хорьки, норки). Все кошки, независимо от породы, подвержены этому заболеванию. Оно носит массoвый характер. Обычно, начинается ранней весной, достигает разгара летом, держится до осени и к зиме постепенно затихает.
Возможность заражения зависит от возраста животного. Котята в возрасте от 2 до 6 месяцев находятся на пике уязвимости панлейкопенией, симптомы заболевания у них проявляются наиболее ярко и классически. Очень серьезному риску заражения так же подвержены беременные кошки и животные со сниженным иммунитетом. У взрослых кошек панлейкопения обычно проходит в легкой, а порой даже бессимптомной форме и может остаться незамеченной. Кошки, которые выживают после заражения или активного переболевания панлейкопенией приобретают длительный иммунитет к данной вирусной инфекции и устойчивы к повторному заражению до 3-5 лет.

Источником заражения являются больные и выздоровевшие кошки, а также кровососущие насекомые (блохи). У выздоровевших животных вирус панлейкопении может сохраняться в течение нескольких месяцев, у зараженных внутриутробно котят – до года. Вирус содержится в слюне, истечениях из носа и глаз, в фекалиях и моче.

Панлейкопения у кошек передаётся преимущественно во время контакта больных и здоровых животных и   внутриутробным путём. Заражение происходит через различные объекты загрязненные возбудителем. Это могут быть поверхности стен, пола, мебели, миски и игрушки, подстилки и лежанки, лотки, вещи владельцев - их одежда и обувь и т.д.

Симптомы и течение Инкубационный период длится от 2 до 12 дней.

У животного внезапно появляется вялость, угнетение, отсутствие аппетита, повышение температуры тела до 40…41° С. отмечается частая рвота. Рвотные массы сначала водянисто-желтые или коричневатые, позже становятся слизистыми, часто с примесью крови. Позже появляется расстройство желудочно-кишечного тракта, развивается диарея. Фекалии жидкие, зловонные, бесцветные, желтоватые с примесью крови, иногда с хлопьями фибрина. Позы и поведение больных кошек свидетельствуют о сильной болезненности в области живота и паха. Больные животные ищут укромные темные, при лихорадке прохладные места, лежат на животе с запрокинутой головой и вытянутыми конечностями, сидят, сгорбившись, над миской с водой, но не пьют. Происходит сильное обезвоживание организма. Кожа становится сухой, вялой,  а шерсть тусклой и взъерошенной.

При прощупывании живота отмечают увеличение лимфатических узлов брыжейки, кишечные петли малоподвижны, болезненны, по структуре напоминают утолщенные шнуры, растянуты жидкостью и газами. При аускультации прослушиваются звуки плеска, воркования или урчания. Ощупывание живота всегда болезненно и может вызвать рвоту.
При остром течении болезни животное быстро снижает упитанность. Гематологическое исследование крови выявляет лейкопению. Заболевание  длится 1 – 5 суток. При сверхостром течении болезни всегда поражается центральная нервная система, гибель наступает через 24 – 48 часов.

Диагностика Панлейкопения кошек по многообразию своей симптоматики может быть сходна со многими другими заболеваниями, в том числе с отравлениями, лейкемией кошек, вирусным иммунодефицитом, панкреатитом.

Так или иначе, а без лабораторной диагностики в случае с панлейкопенией кошек обойтись невозможно. Для подтверждения диагноза в лабораторию отправляют фекалии или кровь больных животных. От павших животных возможно исследование участков кишечника, при условии отбора материала в первые часы после гибели. С помощью иммуноферментного анализа и  ПЦР диагностики этих образцов можно безошибочно установить заболевание. Кроме этого, проведение полного развернутого анализа крови, биохимии крови и анализа мочи, позволят прояснить ситуацию, позволяющую судить о характере воспалительного процесса и степени его воздействия на организм. Все эти исследования можно провести в ФГБУ «Кемеровская МВЛ».

Профилактика заболевания  Самым эффективным способом профилактики панлейкопении является вакцинация. При наличии прививки, даже если произошло заражение, заболевание будет протекать в легкой форме с минимальными последствиями.  

В начале феврале 2020 года в диагностический отдел ФГБУ «Кемеровская МВЛ» поступило  два смыва с кожи ушной раковины собак,  для исследования на кандидамикоз и малассезиоз. При микологическом исследовании обнаружен рост патогенных микроскопических дрожжевых грибов Malassezia pachydermatis. К выделенной культуре определена чувствительность к антимикотикам.

 Наиболее часто, малассезии развиваются в ушных раковинах животных, так как кожа там нежнее и чувствительнее, чем на других участках тела. К тому же именно в слуховом проходе создаются наиболее комфортные условия для размножения дрожжей и другой патогенной микрофлоры, которая может сопровождать данную болезнь. Первым признаком, который может свидетельствовать о том, что у животного развивается малассезия, является появление покраснений вокруг ушной раковины, на морде, животе, в паху, между пальцами и вокруг анального отверстия. Собака начинает расчесывать и вылизывать пораженные грибком Malassezia участки. Это усугубляет процесс развития патологии, так как на коже образуются царапины, в которые попадает гноеродная микрофлора. По клинической картине симптомы похожи на отодектоз (ушной клещ) но характерным отличием является наличие кислого неприятного запаха и обильное выделение серозного экссудата. Поведение животного при этом сильно изменяется. Животное становится вялым, часто наклоняет голову, трясет ушами. При отсутствии лечения малассезия у собак приобретает генерализованную форму и поражает слизистые оболочки и внутренние органы питомца. В этой стадии заболевания требуется специфическое лечение, которое может назначить только квалифицированный ветеринарный специалист, после подтверждения диагноза в ветеринарной лаборатории.

В первой половине февраля 2020 года  в диагностический отдел ФГБУ «Кемеровская МВЛ» поступила проба смыва из влагалища собаки  для исследования на условно-патогенную микрофлору. В результате  проведенного бактериологического исследования выделена культура гемолитической кишечной палочки – Escherichia coli, имеющая серогруппу О26. У выделенной культуры определена чувствительность к антибактериальным препаратам.

При определенных обстоятельствах, вызывающих снижение иммунитета, кишечная палочка попадает во влагалище и начинает активно размножаться, вызывая воспалительные процессы. Если для кишечника присутствие палочки считается физиологической нормой, то для половых органов это становится предпосылкой для развития инфекций мочевыводящих путей  и воспалительных процессов в  репродуктивном тракте.

Бруцеллез представляет собой очень опасную и социально значимую инфекционную болезнь, сопровождающуюся высочайшим уровнем инвалидизации больных и приносящую значительный ущерб экономике, вызывая значительные сельскохозяйственные потери.

Бруцеллёз –  хронически протекающая болезнь животных и человека, вызываемая бактериями рода Brucella. Бруцеллы  относятся  к патогенным микроорганизмам и обладают различной вирулентностью.  Они устойчивы во внешней среде: выживают в почве, навозе, шерсти, коже и воде до 3-5 месяцев. В молоке инфекция сохраняется 45 дней, в брынзе, масле, замороженном мясе — до полугода. 

Существует несколько разновидностей бруцелл, предпочитающих жить в организме животных определённого вида. Основным хозяином вида Brucella melitensis является мелкий рогатый скот — овцы и козы; Brucella abortus вызывает болезни у крупного рогатого скота, верблюдов, яков; Brucella suis живёт в организмах зайцев, северных оленей, домашних и диких свиней; среди лисиц, волков и домашних собак распространена инфекция, вызванная видом Brucella canis. Помимо видовой принадлежности бруцелла может заражать другие виды животных. 

От больных животных бруцеллы выделяются вместе с  мочой, молоком, выделениями из половых органов  и абортированным плодом, инфицируя тем самым кожные покровы животных и окружающую среду. Бактерии Brucella попадают в организм животного алиментарно вместе с инфицированной водой, пищей, и  через микротравмы на поверхности кожи. Бруцеллез имеет много путей распространения и быстро поражает все поголовье.

Клиническое течение бруцеллеза у животных характеризуется полиморфизмом. Основным признаком является аборт. Помимо абортов бруцеллез у животных может сопровождаться орхитами, бурситами, эндометритами, маститами. Часто бруцеллёз  протекает  в скрытой форме и обнаруживаться лишь при специальном обследовании.

Серологические исследования являются основными методами  прижизненной диагностики ранних стадий бруцеллеза или его хронического обострения. В случае малой обсемененности пробы бруцеллами и отрицательных результатов, полученных при посеве исследуемого материала на питательные среды и заражении лабораторных животных, серологический метод может быть единственным, позволяющим диагностировать бруцеллез.

От животных, больных бруцеллёзом, могут заражаться люди. Наиболее опасны для человека B.melitensis, B.abortus и B.suis.  Заражение человека бруцеллезом происходит при непосредственном контакте с больными животными, абортированными плодами, а также при приеме в пищу мясной и молочной продукции, полученной от больного животного без термической обработки. Больной человек выделяет бактерии бруцелл в количестве, недостаточном для заражения окружающих, и не является источником инфекции. Недуг часто приводит к инвалидности, вызывая паралич.

Для профилактики бруцеллёза в благополучных по бруцеллезу хозяйствах необходимо осуществлять постоянный контроль за состоянием поголовья, перегруппировками, ввозом и вывозом животных, соблюдать ветеринарно-санитарные  правила, раз в два года проводить  серологические исследования сывороток крови животных.

Серологическая диагностика – наиболее распространенный метод диагностики бруцеллёза, при котором с помощью различных реакций проводится выявление специфических антител к бруцеллёзу и выявляется нарастание титра антител.

Серологическая диагностика бруцеллеза заключается в обнаружении специфических антител в сыворотке крови животных:

- в реакции агглютинации (РА) в пробирках,

- реакции связывания комплемента (РСК),

- реакции длительного связывания комплемента на холоде (РДСК),

- реакции иммунодиффузии с 0-полисахаридным антигеном (РИД),

- пластинчатой реакции агглютинации с роз бенгал антигеном (роз бенгал проба - РБП)

- реакция непрямой гемагглютинации (РНГА)

и в молоке коров - кольцевой реакции (КР) и других реакциях, утвержденных в установленном порядке.

     Почему так много серологических реакций на бруцеллёз?

Во время бруцеллеза в организме животного происходят защитные реакции, вызванные внедрением возбудителя. На разных этапах развития заболевания в организме больного животного вырабатываются те или иные антитела, которые выявляются в одной или в нескольких реакциях. Так  в начале заболевания образуются  антитела, которые выявляются в основном в реакции агглютинации (РА), а самые поздние антитела (спустя шесть месяцев после заражения) улавливаются в реакции иммунодиффузии (РИД). Поэтому для выявления бруцеллеза разработана не одна реакция. На разных стадиях заболевания животного в зависимости от дозы попавшего в организм возбудителя,  и от резистентности самого  организма животного в тот или иной момент наличие специфических антител к бруцеллёзу показывают лишь определённые реакции.

Поэтому  чтобы уловить  специфические антитела, при  поступлении сыворотки крови в лабораторию для исследования на бруцеллез ставится комплекс серологических реакций (из РБП, РА, РСК, РИД, РНГА, КР),  на основании  результатов которых можно установить  диагноз «бруцеллез».  В зависимости от видов животных, и целей исследования используют те или иные серологические методы.

На ранних стадиях бруцеллезного процесса наиболее чувствительна реакция агглютинации (РА). Агглютинины в сыворотке крови больных животных в низких титрах можно выявить уже с 10-15-го дня заболевания. Наиболее высокий титр антител отмечают обычно через 1-3 месяцев от начала заболевания, в дальнейшем он начинает быстро снижаться. У отдельных особей повышенный титр антител может сохраняться до 2 лет.     

Реакция связывания комплемента (РСК)  и реакция длительного связывания комплемента на холоде (РДСК) – специфичные и высокочувствительные методы  диагностики бруцеллёза, дополняющие данные РА. РДСК  часто применяют вместо РСК  для исследования сывороток крови, обладающих антикомплементарными свойствами. Обе реакции позволяют выявлять комплементсвязывающие антитела к бруцеллам, появляющиеся в крови  больного животного позже агглютининов. В связи с этим РСК (РДСК)  позволяет выявить большее количество больных животных в стадах с хронической инфекцией бруцеллёза. Максимальные титры  комплементсвязывающих антител в РСК (РДСК) регистрируют к 4-му месяцу заболевания, в дальнейшем титр снижается, но в небольшом количестве их обнаруживают в течение нескольких лет. 

Роз бенгал проба (РБП) применяется при плановых профилактических исследованиях животных на бруцеллез в качестве экспресс-метода на неиммунизированных противобруцеллезными вакцинами животных. В основе этой реакции лежит непосредственное соединение антигена и антитела. РБП является специфичным и чувствительным методом, благодаря кислой реакции антигена, ингибируется проявления неспецифических антител. На постановку РБП (роз бенгал проба – пластинчатая цветная реакция агглютинации) уходит несколько минут, однако с ее помощью нет гарантированной возможности количественно оценить наличие антител Сыворотки крови животных благополучных хозяйств, реагировавшие положительно на РБП, сразу же исследуют в РА и РСК, РА и РИД, или в  РНГА для установления титра агглютининов и наличия комплементсвязывающих антител. Сыворотки, с которыми получена отрицательная РБП, дополнительно в РА и РСК (РДСК) не исследуют.      

       Реакции иммунодиффузии с 0-полисахаридным антигеном (РИД).

Сущность метода состоит в выявлении бруцеллезных антител, основанном на способности антител и антигена диффундировать в агаровом геле и при взаимодействии образовывать комплекс антиген-антитело, наблюдаемый в виде линии преципитации. Результат исследований становится известен лишь спустя 48 часов. Используется для контроля эпизоотического состояния по бруцеллезу животных не ранее чем через 1,5 месяца после вакцинации и  для дифференциации положительных реакций, полученных в РА или (и) РСК (РДСК) по истечении 6 месяцев после введения вакцины;

При получении положительного результата в реакции иммунодиффузии, животное признают больным бруцеллезом.

Кольцевая реакция применяется с целью ориентировочной проверки благо­получных по бруцеллезу молочных стад и для проверки молока на рынках. Сущность кольцевой реакции заключается в том, что в молоке бруцеллезных животных при добавлении антигена образуется комплекс антитела с антигеном, который адсорбируется жировыми частицами молока. Жировые частицы вслед­ствие своего малого удельного веса поднимаются наверх, увлекая адсорбиро­ванный агглютинат, который в зависимости от цвета антигена образует на по­верхности жидкости окрашенное кольцо. Преимущество КР с молоком заключается в простоте постановки и быстроте получения результатов. Всех животных, реагирующих по КР в свободных от бруцеллеза стадах, необходимо перепроверять по РА и РСК (РДСК).

Реакция непрямой гемагглютинации (РНГА) при бруцеллезе является специфической и высокочувствительной. Для её проведения используют эритроцитарный бруцеллезный полисахаридный диагностикум. Метод основан на выявлении бруцеллезным эритроцитарным антигеном специфических антител в сыворотке крови больных бруцеллезом животных или иммунизированных вакцинами против бруцеллеза животных. По диагностической эффективности значительно превосходит используемые в ветеринарной практике другие методы диагностики бруцеллеза (РА, РСК, РБП и РИД с ОП-С антигеном), вместе взятые, выявляя больных бруцеллезом животных в более ранние сроки после заболевания. При этом является  экспресс-методом пригодным для массовой диагностики бруцеллеза животных,  результат становится известным в течение 3-4 часов,

Мелкий рогатый скот, иммунизированный против бруцеллеза, в РНГА не исследуют.

Интерпретация результатов серологических исследований на бруцеллёз  во многом зависит от достоверных данных о благополучии хозяйства по бруцеллёзу и вакцинации против бруцеллёза.

Важно соблюдать сроки  разрешающие проведение серологических исследований после применения вакцины, указанные в инструкции. Так как например аглютиногенные вакцины (из шт. Б. абортус 19, Б. абортус 82 и др.) изготавливают из культур бруцелл, находящихся в S- или в SR (RS)-форме. В организме животных, привитых такими вакцинами, синтезируются специфические антитела, гомологичные S-антигену, выявляемые стандартными бруцеллезными диагностическими препаратами в РА, РСК, РДСК, РБП КР с молоком, РИД с 0-ПС антигеном и др. При нарушении инструкции у таких животных будут выявлены вакцинные специфические антитела.

Также важно строго соблюдать правила отбора и  сроки доставки материала для исследования, которые оказывают большое влияние на результаты исследований.

Помимо этого, иногда встречаются индивидуальные неспецифические реакции  при исследовании сывороток на бруцеллёз.

При  постановки РА и РБП, особенно в весеннее время, при исследовании сыворотки крови отдельных незараженных и не вакцированных против бруцеллеза животных с бруцеллезными антигенами могут быть получены неспецифические результаты реакций. Обычно появление таких реакций обусловлено глубокой беременностью, стрессами, прививками против других болезней или носительством близкородственных в антигенном отношении грамотрицательных микроорганизмов (пастерелл, сальмонелл, кампилобактерий,иерсиний и др.), а также рядом других причин.

Кольцевая реакция с молоком (КР)  может давать положительные реакции при исследовании молока коров, больных маститами и другими болезнями, сопровождающимися лихорадкой, а также в первые две недели после отела.

Поэтому при выявлении положительных или сомнительных реакций, рекомендуется проводить повторное исследование  материала, взятого от таких животных, и исследовать их  спустя  15-30 суток в  аналогичных реакциях, а также в других  реакциях показывающих нарастание  или падение титра антител.

Диагностика заболеваний непродуктивных животных наиболее важная и неотъемлемая часть работы ветеринарного врача. Без правильно поставленного диагноза не может быть качественного лечения.

Ветеринарный врач помимо общих анализов (крови, мочи и кала)  может назначить бактериологическое исследование с определением чувствительности к антибиотикам.  Почти всегда ветеринарные специалисты прибегают к этому виду исследования при заболеваниях кожи, глаз, ушей, носоглотки, половых органов животных.

Бактериологический посев - это вид лабораторного исследования, при котором взятый материал помещают в питательную среду и наблюдают, есть ли активный рост патогенной или условно-патогенной микрофлоры. Определяется вид микроорганизма  и его чувствительность к антибиотикам. Это очень важный момент для постановки верного диагноза и назначения эффективной антибиотикотерапии. При выполнении бактериологического анализа  можно обнаружить условно-патогенные микроорганизмы: стафилококки, кишечную палочку, стрептококки, синегнойную палочку, протей, анаэробы и т.д., а также  патогенную микрофлору: сальмонеллы, шигеллы и т. д.

У владельцев животных очень часто возникает вопрос: почему врач сразу не может назначить  антибиотик широкого спектра действия без сдачи бактериологического посева. На самом деле, очень часто, многие микроорганизмы теряют чувствительность к  некоторым препаратам, даже очень хорошим и дорогим. Поэтому  необходим бактериологический  посев, чтобы подобрать нужный  антибиотик, который подавляет рост выделенной культуры.

Бактериологический посев - очень эффективный метод исследования, но недостатком его является длительность (от трех до семи  дней).

На точность результатов влияет несколько факторов:

1. Самолечение (прием антибиотиков). Забор материала должен быть до начала антибиотикотерапии. На фоне приема антибиотиков результат будет существенно искажен. Если животному давали  такие препараты, то необходимо прекратить их прием за 10 дней до исследования. Место, из которого будет произведен забор биоматериала, не должно быть обработано лекарственными препаратами, лосьонами, шампунями.
2. Стерильность: стерильная посуда и стерильные инструменты. Несоблюдение этих требований приведет к контаминации (внешней обсемененности материала представителями кожи и слизистых, окружающей среды, не имеющих клинического значения), что автоматически сделает исследование недостоверным.

Сдать смыв на бактериологический посев можно в ФГБУ «Кемеровская МВЛ». В диагностическом отделе за январь 2020 года проведено 17 исследований на условно-патогенную микрофлору. В 2-х случаях получен  отрицательный результат, в 15-ти случаях выделена культура стафилококка. К каждой выделенной культуре проведена чувствительность к антибиотикам.

В случае невозможности привезти животное, можно взять смыв самостоятельно. Для этого необходимо взять пробирку с транспортной средой в нашей лаборатории. Специалист диагностического отдела объяснит, как правильно взять смыв. Собранный материал должен быть доставлен в лабораторию в течение 24 ч. Весь материал до отправки в лабораторию хранят при комнатной температуре (не в холодильнике!).

После получения результатов, владельцу необходимо показать их ветеринарному врачу, с целью дальнейшего лечения.

С 20.01.2020 по 04.02.2020 г. заведующий диагностическим отделом прошла курсы повышения квалификации по теме: «Основы безопасной работы с патогенными биологическими агентами (ПБА) I-II групп» в ФКУЗ «Иркутский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора», г. Иркутск. На обучении были рассмотрены требования безопасной работы с патогенными биологическими агентами I-II групп патогенности, а также общие теоретические вопросы микробиологии, общей вирусологии, дезинфектологии и иммунологии.

Во время практических занятий были освоены основные методические приемы безопасной работы за лабораторным столом, посев инфицированного материала, методы заражения и вскрытия лабораторных животных, а также использование средств индивидуальной защиты для различных видов работ.

По окончании курса повышения квалификации получено удостоверение установленного образца.

В конце января 2020 года в диагностический отдел ФГБУ «Кемеровская МВЛ» поступило 246 проб стабилизированной крови от крупного рогатого скота (КРС), для исследования на наличие ДНК провируса лейкоза методом ПЦР. По результатам исследования было выявлено 164 положительного результата.

Лейкоз коров – неизлечимое заболевание инфекционного происхождения, отличается длительным хроническим течением. Патология сопровождается злокачественным поражением кроветворных органов, другое ее название – гемобластоз, или лейкемия. Возбудителем болезни выступает ВЛКРС (вирус лейкоза крупного рогатого скота). Проникнув в кровеносную систему животного, он начинает размножаться в лимфоцитах. Со временем это становится причиной увеличения количества единиц лимфоидных элементов и кроветворных частиц с повреждением механизма их созревания. Следствием активности вирионов является диффузное поражение внутренних органов измененными клетками крови или формирование опухолей.

В конце января 2020 года в диагностический отдел ФГБУ «Кемеровская МВЛ», в рамках проведения государственного эпизоотологического мониторинга, доставлено 67 проб сыворотки крови от свиней (откормочное поголовье) для определения напряженности иммунитета против вируса классической чумы  свиней.

В результате  исследования методом иммуноферментного анализа, во всех доставленных пробах выявлен недопустимый уровень поствакцинальных антител.

Классическая чума свиней (Pestis suum)—инфек­ционное высококонтагиозное заболевание, характеризующееся ли­хорадкой, поражением легких и желудочно-кишечного тракта, тяжелым септическим процессом с картиной геморрагического диатеза.

Возбудитель заболевания РНК-содержащий вирус, относящийся к роду Pestivirus.
Вирус поражает только домашних и диких свиней независимо от породы и возраста.
Источником возбудителя являются клинически больные и  переболевшие животные-вирусоносители.

Больные  животные  выделяют вирус с мочой, калом, истечениями из носа, со спермой. Факторы передачи возбудителя — загрязнённые выделениями больных корма, вода, подстилка, навоз и др. Естественное заражение свиней чаще происходит через пищеварительный тракт, органы дыхания, реже через повреждённую кожу.

Классическая чума свиней возникает в любое время года и  протекает в виде эпизоотии.

Наиболее эффективной мерой профилактики классической чумы свиней является вакцинация животных.